LudgerTag™ 2-AB(2-氨基苯甲酰胺)多糖標記試劑盒(貨號:LT-KAB-A2)包含經胺化還原反應使染料結合在多糖未結合還原端基的試劑,使用2-氨基苯甲酰胺(2-AB)標記未結合多糖。
應用:用2-氨基苯甲酰胺(2-AB)標記未結合多糖
染料性質
分子量 136.15
熒光 λex(染料) = 320 nm, λem = 420 nm
結構
樣品數:通常每套標記試劑較佳情況下可分析15個獨立樣品。
樣品量:每個樣品含25pmol到25nmol多糖。
適合檢測的樣品:帶有未結合還原末端的純化聚糖,都可以進行標記。
結構完整性:未發現唾液酸、巖藻糖、硫酸鹽或磷酸鹽的損失(<2摩爾百分比)。
標記效率:通常大于85%(取決于樣品)。
標記選擇性:本質上是化學計量標記。
儲存:室溫下暗處儲存。遠離熱源、避光和防潮。所供試劑至少可穩定保存兩年。
運輸:該產品可在室溫下運輸。
處置:使用時涉及的玻璃或塑料器皿以及溶劑,應確保不含糖化酶及外源性碳水化合物。在所有樣品處理時,使用無粉末手套,避免受到外源性碳水化合物的污染。標記試劑設計的所有步驟都必須在干燥環境下操作,并使用干燥的玻璃和塑料器皿。一旦打開試劑瓶,應立即使用。多余試劑根據當地安全規則丟棄。
安全:僅供研究用。不得用于人體或藥用。請閱讀安全數據表(SDS)了解所有相關化學品。標記試劑涉及的操作,都應配備使用適當的個人安全保護裝置 - 眼鏡、耐化學性手套(如 腈類手套),以及在實驗室通風柜進行操作。
試劑盒組成
每個標記試劑盒包括1瓶以下試劑:
Cat. | # Item | Quantity |
LT-2AB-01 | 2-AB染料 (2-氨基苯甲酰胺) | 5 mg |
LT-DMSO-01 | 二甲基亞砜 DMSO | 350 μl |
LT-ACETIC-01 | 冰醋酸 | 500 μL |
LT-CYANOB-01 | 氰基硼氫化鈉(還原劑) | 6 mg |
所需的其他試劑和設備
- 加熱模塊、爐或相近功能的干熱器(不能使用水浴),設定在65°C
- 旋轉蒸發儀(例如Savant, Heto, 或其它)
- 反應小瓶 (e.g. 聚丙烯 微量離心瓶)
- 注:如果進行樣品標記后洗滌(參見樣品洗滌部分),則需要其它試劑。
標記操作時間線
LudgerTag 標記過程,加上可選樣品標記后洗滌,通常需要4-5個小時:
過程 | 時間 | 總時間(小時) |
樣品轉移到反應瓶并干燥 | 30分鐘 | 0.5 |
配置并加入標記試劑 | 15分鐘 | 0.75 |
樣品和試劑一起培養 | 3 小時 | 3.75 |
標記后洗滌 | 1小時 | 4.75 |
還原性胺化
標記反應涉及一個兩步反應過程。 (見圖1):
1.希夫堿生成
具有未結合還原末端的多糖,其末端在閉環(有環)和開環(無環)狀態之間處于平衡狀態。染料的伯胺對無環還原端基殘基的羰基碳進行親核進攻,形成部分穩定的席夫堿。
2. 希夫堿還原
希夫堿亞胺基通過化學還原生成穩定標記的多糖。
圖1:通過還原性胺化反應,用2-氨基苯甲酰胺標記多糖
標記操作概述
LudgerTag 多糖標記試劑盒,用于熒光或發色標記帶有為結合還原端基的多糖。在所中色譜和結構序列分析中,經標記的多糖既可以進行高靈敏度熒光檢測,也可以進行紫外吸收監測,包括使用LudgerSep液相色譜柱的色譜分析和使用外切糖苷酶的序列分析(參見 參考1-5, 7)。
標記過程概述如下:
1 多糖準備
準備多糖樣品,去除類似鹽和洗滌劑等可能干擾標記過程的污染物。
2 多糖干燥
將樣品置于反應小瓶中干燥。
3 標記試劑準備
將試劑盒中相關試劑混合制備新鮮的染料標記溶液。
4 將標記試劑加入多糖中
將小量的標記溶液加入每一份多糖樣品中
5 培養
培養樣品使標記反應進行下去。
6 標記后洗滌
培養完成后,如有必要(根據后續分析過程而定),直接進入洗滌流程以去除過量的標記試劑。.
7 經標記的多糖儲存或者分析
經標記的多糖樣品現在可以用于分析了。
樣品準備
要進行標記的多糖樣品,無論是純化的或是多糖混合物,必須包含未結合的還原端基,顆粒狀且不含無機鹽,并溶于易揮發的溶劑體系中(建議是純水)。
下列物質可能干擾標記反應,必須在進行LudgerTag™ 標記之前,事先從多糖樣品中去除:
不揮發溶劑
不揮發鹽,尤其是過渡金屬離子
洗滌劑
染料和染色劑,例如考馬斯藍
不揮發鹽,尤其是過渡金屬離子
洗滌劑
染料和染色劑,例如考馬斯藍
Ludger提供了一系列LudgerClean™試劑盒,用于在Ludgertag™標記之前洗滌多糖樣品。這些內容在LudgerClean多糖洗滌指南[參考6]中有詳細說明。
標準樣品制備概述如下:
1 多糖純化
如有必要,從樣品中按照多糖洗滌指南[參考6]中所述去除非碳水化合物污染物。
2 將樣品轉移至反應小瓶中
從典型糖蛋白中獲得的多糖,樣品量應在100個皮摩爾-50納米摩爾的范圍內。單一的純多糖,即使僅有5皮摩爾的量,也可以被標記,并在之后高效液相色譜分析中檢測出。適用的反應小瓶,包括小型聚丙烯微離心管和可用于PCR操作的試管。
3 樣品干燥
理論上,應使用旋轉蒸發器干燥樣品。如果條件不允許,可以小心使用冷凍干燥(尤其要確保在小瓶的底部的樣品,凍干成小而致密的物質)。 不要將樣品置于高溫(>28℃)或極端pH環境下,因為這樣會導致唾液酸在酸催化下耗損(高溫、強酸),或多糖還原端的異構反應(強堿)。
標記試劑準備
按如下過程制備新鮮標記試劑:
4 制備DMSO-醋酸混合液
150μl冰醋酸加入盛有DMSO的小瓶中,并用移液器抽吸混合。
冰醋酸和DMSO的貨號分別為LT-ACETIC-01和 LT-DMSO-01。
小心敲擊安瓿瓶以震落附著安瓿上半部的內容物,然后小心打開安瓿瓶。
如果DMSO凍成固體,在烘箱或加熱快上在30-65℃之間緩慢加熱小瓶(在啟封前)。
5 加入染料
將100μl DMSO-醋酸混合液加入LudgerTag™ 2-AB (2-氨基苯甲酰胺) 染料小瓶中,混合直至染料全部溶解。
染料貨號為LT-2AB-01。
6 加入還原劑
將溶解的染料加入盛有LudgerTag™ 氰基硼氫化鈉 (還原劑) 的小瓶中,使用移液器抽吸混合直至還原劑全部溶解形成最終的標記試劑。
氰基硼氫化鈉還原劑的貨號是LT-CYANOB-01。
如果還原劑難以溶解,那么在65℃的恒溫培養箱中,或者加熱塊上,輕緩地加熱至多4分鐘。如還原劑仍未全溶,補加10μl純水并混合均勻。
標記試劑應防潮,并在配置60分鐘內使用。
標記反應
7 將標記試劑加入樣品
將5μl標記試劑加入到每一份經干燥的多糖樣品中,蓋上離心管,徹底混合,然后輕輕敲擊以確保標記溶液位于小瓶的底部。
8 培養
將反應小瓶放在65℃的加熱塊、砂浴或烘箱中,培養3小時。
培養必須在干燥的環境下進行。請使用培養箱或干燥塊,請務必不要使用水浴。
樣品必須全部溶解在標記溶液中,才能有效進行標記。為了促進全部溶解,樣品可在培養溫度達到65℃后渦旋混合30分鐘,然后繼續培養。
在大多數情況下,培養時間可以縮短至2小時或延長至4小時,而不會顯著改變標記反應結果。
9 離心并冷卻
培養結束后取出樣品,短暫離心微量試管,并讓其全部冷卻至室溫。
LudgerClean™ S 標記后樣品洗滌
對于特定的應用 - 例如后續的HPLC分析,標記后的樣品洗滌(去除多余的染料和其它標記試劑) 是必不可少的。使用LudgerClean™ S 小柱 (貨號 LC-S-Ax, 此處x代表試劑盒中小柱的數量)按試劑盒所附標準操作程序可以完成樣品洗滌。
對于過量標記試劑不會影響后續樣品分析的應用而言,樣品標記后洗滌并非必需。這些分析手段包括碳水化合物電泳,游離染料會從標記多糖條帶處分離開。
LudgerTag™ 2AA標記多糖的分析
LudgerTag™ 2-AB標記多糖可通過一系列分析方法進行研究,包括HPLC,凝膠電泳和質譜。 這些會在參考資料8里詳細敘述,在下文也有概述。
高壓液相色譜分析
LudgerTag™ 2-AB標記多糖混合物可以通過一系列HPLC(高壓液相色譜)方法進行分離和分析,也包括LudgerSep HPLC:
分析類型 |
柱子 |
貨號 |
帶電荷和中性多糖的分離 |
LudgerSep™ C |
LS-C-01 |
帶電荷和中性多糖的剖面分析 |
LudgerSep™ N |
LS-N-01 |
中性多糖的分離 |
LudgerSep™ R 我要下單
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