離子交換層析介質(zhì)——層析介質(zhì)優(yōu)選西寶生物
離子交換層析是生物大分子分離純化常用的方法。以瓊脂糖凝膠為基質(zhì)的離子交換層析介質(zhì)保留了天然多糖化合物極好的親水性及孔結(jié)構(gòu),對生物活性大分子具有很好的相容性,特別適用于蛋白質(zhì)、酶、多糖、核酸、質(zhì)粒等的分離純化。西寶生物離子交換層析介質(zhì)以自制的瓊脂糖凝膠為基質(zhì),以-(CH2)2N(C2H5)2、-CH3N(CH3)3、-CH2COO-、-SO3-為配基,具有很好的化學和物理穩(wěn)定性。
表1 離子交換疏水層析介質(zhì)的理化性質(zhì)和產(chǎn)品特性
參數(shù) |
指標 |
|
功能基及交換容量 |
DEAE |
0.11-0.16 mmol/mL wet gel |
Q |
0.18-0.25 mmol/mL wet gel |
|
CM |
0.09-0.13 mmol/mL wet gel |
|
SP |
0.18-0.25 mmol/mL wet gel |
|
動態(tài)載量 |
DEAE |
110 mg HSA/mL wet gel |
Q |
120 mg HSA/mL wet gel |
|
CM |
50 mg RNase/mL wet gel |
|
SP |
70 mg RNase/mL wet gel |
|
形狀 |
球形 |
|
介質(zhì)平均粒徑 |
90 μm (45-165) |
|
流速高達( |
|
|
建議流速 |
< |
|
耐壓高達 |
0.3 MPa (3 bar) |
|
pH穩(wěn)定性 |
3-13(長時間);2-14(短時間) |
|
化學穩(wěn)定性 |
室溫下 |
|
物理穩(wěn)定性 |
溶液的pH或離子強度影響介質(zhì)的體積變化率<2% |
|
保存 |
4-30℃(20%乙醇) |
層析操作通常包括裝柱、平衡、進料、淋洗、洗脫、再生等步驟。具體的操作方法如下(以20 cm×1.6 cm I.D., H=7.5 cm, CV=15 mL為例):
- 平衡:用5~10CV的平衡緩沖液(Buffer A,如20 mM PB, pH7.0,具體的緩沖體系應(yīng)根據(jù)目標蛋白的穩(wěn)定性和等電點、離子交換介質(zhì)的種類進行篩選和優(yōu)化)以2-5mL/min的流速平衡層析柱,至流出液電導和pH不變(與平衡液一致)。
- 進料:樣品緩沖液應(yīng)盡可能與平衡液一致。固體樣品可用平衡液溶解配制;低濃度樣品溶液可用平衡液透析或添加相應(yīng)量的鹽;高濃度樣品溶液可用平衡液稀釋。為了避免堵塞層析柱,樣品應(yīng)經(jīng)離心或微濾(0.45 μm)處理。進料量根據(jù)介質(zhì)的載量和料液中目標蛋白的含量計算。
- 淋洗:以2-5 mL/min的流速上樣,并繼續(xù)用平衡緩沖液淋洗至基線。
- 洗脫:用洗脫緩沖液(20 mM PB+1 M NaCl, pH7.0,也可采用pH梯度洗脫)以2-5mL/min的流速洗脫(可采用線性梯度洗脫或階越梯度洗脫),收集流出液。
- 再生:每次層析之后可用1-2 M NaCl清洗層析柱,除去強結(jié)合的蛋白。
-
原位清洗:介質(zhì)使用數(shù)次(具體次數(shù)與原料的種類和來源及實驗要求有關(guān))后,需要對介質(zhì)進行在位清洗:
(1)對于通過離子鍵強結(jié)合的蛋白,可用2 M NaCl以1-2 mL/min的流速反向清洗10-15 min;(2)對沉淀蛋白、疏水性結(jié)合的蛋白、脂蛋白,可用1 M NaOH以1-2 mL/min的流速反向沖洗3-4 CV;(3)對強疏水性結(jié)合的蛋白、脂蛋白和脂類物質(zhì),可用70%乙醇或30%異丙醇以1-2 mL/min的流速反向沖洗3-4 CV(使用高濃度的有機溶劑時,為了避免產(chǎn)生氣泡,應(yīng)采用逐步增加有機溶劑濃度的方法)。 - 保存:4-30℃下20%乙醇中保存(4℃下有利于長期保存);層析柱中的介質(zhì)可用20%的乙醇沖洗后保存于4-30℃。
- 其它注意事項:在裝柱、使用和保存柱子的時候,要避免柱子流干或密封不嚴,防止氣泡進入。
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