疏水層析介質(zhì)——層析介質(zhì)優(yōu)選西寶生物
參數(shù)
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指標
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基質(zhì)
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6%交聯(lián)瓊脂糖凝膠
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功能基及配基密度
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Butyl-S
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10 μmol/mL wet gel |
Butyl
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40 μmol/mL wet gel |
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Phenyl (high)
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40 μmol/mL wet gel |
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Phenyl (low)
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25 μmol/mL wet gel |
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形狀
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球形
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介質(zhì)平均粒徑
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90 μm (45-165) |
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最高流速(25℃)
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600 cm/h
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推薦流速
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<150 cm/h
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最高耐壓
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0.3 MPa (3 bar) |
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pH穩(wěn)定性
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3-13(長時間);2-14(短時間)
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化學(xué)穩(wěn)定性
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室溫下1M NaOH、0.01M HCl、6M鹽酸胍、8M脲浸泡7天,性能無明顯變化
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物理穩(wěn)定性
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溶液的pH或離子強度影響介質(zhì)的體積變化率<2%
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保存
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4-30 ℃(20%乙醇)
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層析操作通常包括裝柱、平衡、進料、淋洗、洗脫、再生等步驟。具體的操作方法如下(以20 cm×1.6 cm I.D., H=7.5 cm, CV=15 mL為例):
- 平衡:用5~10CV的平衡緩沖液(Buffer A,如50 mM PB+1.0-2.0 M (NH4)2SO4, pH 7.0,具體的緩沖體系、鹽的種類及濃度應(yīng)根據(jù)目標蛋白的穩(wěn)定性及疏水性、層析介質(zhì)的疏水性進行篩選和優(yōu)化)以2-5 ml/min的流速平衡層析柱,至流出液電導(dǎo)和pH不變(與平衡液一致)。
- 進料:樣品緩沖液應(yīng)盡可能與平衡液一致。固體樣品可用平衡液溶解配制;低濃度樣品溶液可用平衡液透析或添加相應(yīng)量的鹽;高濃度樣品溶液可用平衡液稀釋。為了避免堵塞層析柱,樣品應(yīng)經(jīng)離心或微濾(0.45 μm)處理。進料量根據(jù)介質(zhì)的載量和料液中目標蛋白的含量計算。
- 淋洗:以2-5 mL/min的流速上樣,并繼續(xù)用平衡緩沖液淋洗至基線。
- 洗脫:用洗脫緩沖液(Buffer B,如50 mM PB,pH7.0)洗脫(可采用線性梯度洗脫或階越梯度洗脫),收集流出液。
- 再生:每次層析之后可用3 CV低離子強度的緩沖液以2-5 mL/min的流速再生層析柱,除去疏水結(jié)合較強(可逆結(jié)合)的蛋白,然后依次用3 CV 的水沖洗,5 CV的平衡緩沖液平衡。
- 原位清洗:介質(zhì)使用數(shù)次(具體次數(shù)與原料的種類和來源及實驗要求有關(guān))后,需要對介質(zhì)進行在位清洗,除去不可逆結(jié)合的蛋白和其他物質(zhì):
(1)對于通過離子鍵強結(jié)合的蛋白,可用2 M NaCl以1-2 mL/min的流速反向清洗10-15 min;(2)對沉淀蛋白、疏水性結(jié)合的蛋白、脂蛋白,可用1 M NaOH以1-2 mL/min的流速反向沖洗3-4 CV;(3)對強疏水性結(jié)合的蛋白、脂蛋白和脂類物質(zhì),可用70%乙醇或30%異丙醇以1-2 mL/min的流速反向沖洗3-4 CV(使用高濃度的有機溶劑時,為了避免產(chǎn)生氣泡,應(yīng)采用逐步增加有機溶劑濃度的方法)。
- 保存:4-30℃下20%乙醇中保存(4℃下有利于長期保存);層析柱中的介質(zhì)可用20%的乙醇沖洗后保存于4-30℃。
- 其它注意事項:在裝柱、使用和保存柱子的時候,要避免柱子流干或密封不嚴,防止氣泡進入。
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